药理学实验 下载 网盘 kindle mobi 115盘 pdf pdb rtf

　　本书为全国17所中医药院校联合编写的实验教材。全书共12章，系统地介绍了药理学实验的基本知识和实验设计的基本原则，包括了54个药理学教学中的常用基本实验，具新药药理研究的基本要求和生物检定的基本知识、实验设计训练，分列目的、原理、材料、方法、结果、评价、注意事项、思考题项目。实验性质既有验证性实验、机制分析，又有设计和综合性实验。所选实验方法可靠、重现性好。本书主要作为高等中医药院校药学类专业教材使用，也可供药理学工作者参考。

章　实验研究的基本要求

　节　实验设计的基本原则

　第二节　实验记录的基本要求

　第三节　实验数据的整理与统计方法

　第四节　实验报告的写作

第二章　实验动物基本知识

　节　常用实验动物的种类

　第二节　常用实验动物的品种和品系

　第三节　常用实验动物的生物学特性和特点

　第四节　实验动物选择的一般要求

第三章　动物实验基本操作方法

　节　实验动物的捉拿、固定、标记

　第二节　实验动物的给药方法

　第三节　药理实验动物用药量的计算方法

　第四节　实验动物的麻醉、采血及处死方法

第四章　药理学总论实验

　实验一　药物剂量对药物作用的影响

　实验二　药物理化性质对药物作用的影响

　实验三　肝功能损害对药物作用的影响

　实验四　不同给药途径对药物作用的影响

　实验五　药物的拮抗作用

　实验六　磺胺嘧啶半衰期的测定

　实验七　半数致死量的测定

　实验八　半数有效量的测定

第五章　传出神经系统实验

　实验一　毛果芸香碱和阿托品对腺体分泌的作用

　实验二　药物对家兔离体肠平滑肌的作用

　实验三　传出神经系统药物对血压的作用

　实验四　有机磷农药中毒及其解救

　实验五　传出神经系统药物对小鼠肠蠕动的影响

　实验六　药物对瞳孔的影响

第六章　中枢神经系统实验

　实验一　药物对动物自发活动的影响

　实验二　硫酸镁的抗惊厥作用和中毒时钙盐的拮抗作用

　实验三　尼可刹米对抗吗啡的呼吸抑制作用

　实验四　氯丙嗪对发热小鼠体温的影响

　实验五　药物的抗电惊厥作用

　实验六　镇静催眠药的协同作用和对抗中枢兴奋药的作用

　实验七　药物镇痛作用（扭体法）

　实验八　药物镇痛作用（热板法）

　实验九　氯丙嗪对家兔基础体温的影响

第七章　心血管系统药理实验

　实验一　药物对离体蛙心的强心作用

　实验二　药物抗心律失常作用

　实验三　药物抗心肌缺血实验（垂体后叶素致心肌缺血法）

　实验四　药物对豚鼠离体右心房的作用

　实验五　可乐定降压作用原理分析

第八章　内脏系统药理实验

　实验一　利尿药物对家兔尿量的影响

　实验二　药物的祛痰作用（酚红排泌法）

　实验三　药物对豚鼠的平喘作用（喷雾引喘法）

　实验四　药物的镇咳作用（氨水引咳法）

　实验五　药物对大鼠胃液分泌的影响

　实验六　药物对大鼠胃黏膜的保护作用

　实验七　药物对小鼠胃排空的作用

　实验八　药物的抗凝血作用

　实验九　药物对离体子宫的影响

第九章　免疫系统实验

　实验一　药物对单核-巨噬细胞吞噬功能的影响（碳粒廓清法）

　实验二　药物对血清溶血素抗体水平的影响

　实验三　药物对二硝基氯苯致小鼠迟发型过敏反应的影响

第十章　抗炎实验

　实验一　药物对二甲苯致小鼠耳郭肿胀的影响

　实验二　药物对大鼠炎性足肿胀的影响

　实验三　药物对小鼠肉芽肿的影响

　实验四　药物对小鼠腹腔毛细血管通透性的影响

第十一章　化疗药物实验

　实验一　链霉素的毒性反应和钙的拮抗作用（小鼠实验法）

　实验二　链霉素的毒性反应和钙的拮抗作用（家兔实验法）

　实验三　链霉素的毒性反应和钙的拮抗作用（豚鼠实验法）

　实验四　药物的体外抗菌实验

　实验五　药物的体内抗菌实验

第十二章　其他实验

　实验一　小鼠耐寒实验

　实验二　小鼠耐缺氧试验

　实验三　小鼠游泳试验

　实验四　过氧化脂质的测定

　实验五　热原试验

　实验六　溶血性试验

　实验七　药物过敏实验

　实验八　药物刺激性实验

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　　2.局部麻醉 浸润麻醉、阻滞麻醉和椎管麻醉一般应用0.5%～1.0%盐酸普鲁卡因注射；眼、鼻、咽喉和黏膜表面麻醉可用2%盐酸可卡因溶液，滴入后数秒钟即可出现麻醉。如：

　　（1）兔在眼球手术时，可于结膜囊滴入0.02%盐酸可卡因溶液，数秒钟即可出现麻醉。

　　（2）猫的局部麻醉一般应用0.5%～1.0%盐酸普鲁卡因注射。黏膜表面麻醉宜用2%盐酸可卡因。

　　（3）犬的局部麻醉用0.5%～1.0%盐酸普鲁卡因注射。眼鼻、咽喉表面麻醉可用2%盐酸可卡因。

　　3.麻醉注意事项

　　（1）静脉注射必须缓慢，同时观察肌肉紧张性、角膜反射和对皮肤夹捏的反应，当这些活动明显减弱或消失时，立即停止注射。配制的药液浓度要适中，不可过高，以免麻醉过急；但也不能过低，以减少注入溶液的体积。

　　（2）麻醉时需注意保温。麻醉期间，动物的体温调节功能往往受到抑制，出现体温下降，可影响实验的准确性。此时常需采取保温措施。

　　（3）慢性实验时，在寒冷冬季，麻醉剂在注射前应加热至动物体温水平。

　　（4）麻醉深度不够时，必须经过一定时间才能补足麻醉剂，且一次补加剂量不宜超过原剂量的20%～25%。

　　二、实验动物采血方法

　　1.小鼠大鼠的采血方法

　　（1）剪尾采血法 当所需血量很少时采用本法。固定动物并露出鼠尾。将尾部毛剪去后消毒，然后浸在45℃左右的温水中数分钟，使尾部血管充盈。再将尾擦干，用锐器（刀或剪刀）割去尾尖0.3～0.5cm，让血液自由滴入盛器或用血红蛋白吸管吸取，采血结束，伤口消毒并压迫止血。也可在尾部作一横切口，割破尾动脉或静脉，收集血液的方法同上。每鼠一般可采血10次以上。小鼠每次可取血0.1ml，大鼠0.3～0.5ml。

　　（2）鼠尾刺血法 大鼠用血量不多时（仅做白细胞计数或血红蛋白检查），可采用本法。先将鼠尾用温水擦拭，再用酒精消毒和擦拭，使鼠尾充血。用7号或8号注射针头，刺人鼠尾静脉，拔出针头时即有血滴出，一次可采集0.5～1.0ml。如果长期反复取血，应先靠近鼠尾末端穿刺，以后再逐渐向近心端穿刺。

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